1、实验设计： 本研究在昆仑山中段北坡（36°10′–36°50′N，80°10′–80°50′E）海拔1707米至3548米之间选择七个样带进行取样，包括荒漠（1707 m）、山地半灌木荒漠（1960 m、2448 m和2746 m）、山地荒漠草原（2905 m）以及高寒草原（3248 m和3548 m）（表1）。在采样期间，1707 m海拔处未发现植物。在1960-2746 m海拔处，植被主要由灌木和半灌木组成，如沙拐枣 (Calligonum roborovskii)、枇杷柴 (Reaumuria soongonica) 和合头草 (Sympegma regelii)。2905 m海拔处的植被属于山地荒漠草原，主要包括针茅 (Stipa capillata)、绢蒿 (Seriphidium rhodanthum) 和芨芨草 (Achnatherum splendens)。3548 m海拔处的植被属于高寒草原，优势植物为紫花针茅 (Stipa purpurea)、细叶嵩草 (Kobresia filifolia) 和委陵菜 (Potentilla)。 2、采样方法： 根据植被类型分类，在海拔3548 m、3248 m和2905 m处，分别设置四个独立的1 m×1 m样方，样方之间水平间隔10 m。在海拔2746 m、2448 m、1960 m和1707 m处，设置四个独立的10 m×10 m大样方，样方之间水平间隔100 m。在每个样方内，调查了植物多样性和植被覆盖度，并采集了植被的地上部分。随后，在移除凋落物后，沿每个样方的对角线随机采集五个表层土芯（0-10 cm）。将这些表层土芯混合形成一个混合样品。总计从七个不同海拔水平的样方中采集了28份土壤样品。在土壤采样过程中，始终佩戴一次性手套，并在采集每个样品前用75%酒精对土钻进行消毒。将土壤样品带回实验室后，为避免交叉污染，使用经紫外线消毒30 min的2 mm筛网对不同海拔的土壤进行过筛。之后，将土壤样品分成两份：一份用于风干以分析理化性质，另一份则储存于-20℃下，用于后续的土壤微生物DNA提取。 3、分析过程： 采用E.Z.N.A.® Soil DNA Kit提取土壤DNA，利用TBS-380荧光计测定DNA浓度，NanoDrop 2000检测纯度，1%琼脂糖凝胶电泳评估完整性。DNA经Covaris M220打断至约400 bp，构建双端测序文库，并在Illumina NovaSeq PE150平台进行宏基因组测序。测序数据已上传至国家基因组科学数据中心GSA数据库（PRJCA017392）。 原始序列经Fastp进行质量控制，采用MEGAHIT完成序列组装，利用Prodigal预测开放阅读框（ORF），筛选长度≥100 bp基因并翻译为氨基酸序列。通过KEGG数据库注释碳循环相关功能基因，并采用SOAPaligner聚类构建非冗余基因集（95%序列一致性）。利用HMMER进行CAZyme功能注释，将其划分为GHs、GTs、CEs、CBMs、PLs和AAs六类酶家族；采用RPKM标准化基因丰度，计算功能基因α和β多样性，并结合Diamond和NR数据库开展优势类群物种注释。 所有统计分析在R 4.2.1中完成。采用单因素方差分析和Duncan检验比较不同海拔间功能基因、微生物及环境因子的差异；利用Shannon指数评估α多样性，线性回归分析海拔、多样性及功能基因丰度间关系；通过PCoA和PERMANOVA分析群落组成及酶组成差异。进一步采用RDA、VPA、Pearson相关分析和Mantel检验揭示环境因子、微生物群落与碳循环功能基因的关系，并利用非线性回归分析MAOC/POC比值与环境因子的响应关系。